幾種測量飼料蛋白質含量的對比分析
生活很多地方需要進行蛋白質含量的測定，涉及到農林牧副漁等各個方面的內容，我們在進行測定的時候，最擔心的就是測定結果不準確，進而導致我們的后續工作開展不合理，即使是方法正確，也可能導致最后帶不來很好的收益，下面我們來看下幾種測量飼料蛋白質含量的對比分析，希望可以給大家帶來一些幫助。
蛋白質營養是動物營養的關鍵，是動物生長發育和生產的基礎，其含量是評價飼料營養品質的直接指標。測定飼料粗蛋白質含量是否快捷，關鍵在于樣品消化過程是否方便、省時。目前GB/T6432-1994規定了用硫酸銅作催化劑用濃硫酸進行消化，消化時間較長。本研究用濃硫酸和過氧化氫進行樣品消化，并將兩種消化方法得到的消化液進行測定，比較測得的粗蛋白質含量的差異。旨在探討一種粗蛋白測定的快速消化方法，以便滿足飼料企業需要快速獲得樣品及產品中粗蛋白質含量的要求，真正達到快速、廉價、高效、節能。
開始研究之前準備好下面的儀器和試劑：NPCa-02型氮、磷、鈣快速測定儀及四孔消化爐、實驗室用樣品粉碎機、分析天平、滴定管。試劑濃硫酸：(GB625)化學純；硫酸銅：(GB665)化學純；硫酸鈉：(HG3-920)化學純；鹽酸標準滴定液：0.05M鹽酸溶液；混合指示劑：甲基紅(分析純)1g•L-1乙醇溶液和溴甲酚綠(分析純)5g•L-1乙醇溶液等體積混合；硼酸吸收液：硼酸(化學純)10g•L-1溶液；40%氫氧化鈉溶液；30%過氧化氫。
采用的簡單消化方法：國標法、稱取樣品0.5-1g，準確至0.0002g，無損地放入消化管中，加入硫酸銅0.4g，硫酸鈉6g，與試樣混合均勻，再加入濃硫酸10mL和2粒玻璃珠。將消化管放入消化爐中小心加熱，待樣品焦化，泡沫消失，再加大火力使溫度達到360～410℃，直至溶液澄清后，再加熱消化15min。濃硫酸、過氧化氫法稱取樣品0.5-1g，準確至0.0002g，無損地放入消化管中，加入濃硫酸10mL，放入消化爐中，將消化爐電壓調至220V，消化至大量棕色煙冒出且消化液呈醬油色，取出消化管稍微冷卻后加入3～5mL過氧化氫，同時將消化爐電壓調至150～180V，并將消化管重新放入消化爐中消化2～35min，仍用上法，向消化管內滴入過氧化氫直至消化液幾乎無色，再移入消化爐中繼續消化5～10min取出，冷卻至室溫。氨的蒸餾：均采用半微量法進行蒸餾。
不同粗蛋白質含量的飼料產品的測定結果對魚配合飼料、豬濃縮料、乳豬配合飼料等6個樣品的粗蛋白質分別用兩種消化方法消化后進行測定，分別測定10次，測定結果見下表。
從表可見，對于不同飼料蛋白含量(CP18%～41%)的飼料產品而言，國標法所檢測到的粗蛋白質含量與濃硫酸、過氧化氫法測得的粗蛋白質含量相比無顯著差異。對于國標法中樣品的消化所用試劑量較小，價格相對偏低，但存在消化時間長，耗電多的缺點。一般樣品要達到要求需消化1～2h。而利用濃硫酸、過氧化氫方法進行消化，每個樣品消化只需30～40min即可。二者相比每次消化可以節約一半的時間。從檢測結果看，兩種消化方法對粗蛋白質的測定結果無顯著影響。目前，飼料中粗蛋白測定的國標法中消化使用濃硫酸，并用硫酸銅和硫酸鈉作催化劑。在濃硫酸、過氧化氫法未列入國標之前，飼料企業對于常規質檢可用此種消化方法，若遇到具有爭議性的結果，仍需采用國標法中的消化方法進行樣品消化和粗蛋白質測定。
所以，相對來說，我們在進行相關蛋白質含量測定的時候，應該考慮的如何進行測量才可以得出正確的結果，不能自己在進行養殖等生產的時候，直接在源頭上出現錯誤，使得自己的整個利用飼料進行養殖的計劃失敗。
